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拼裝備更要靠細(xì)節(jié)的IHC

 生物_醫(yī)藥_科研 2019-01-17

先介紹一下IHC,,官方解釋?zhuān)好庖呓M織化學(xué)(Immunohistochemistry,IHC)是利用抗原與抗體特異性結(jié)合的原理,,通過(guò)化學(xué)反應(yīng)使標(biāo)記抗體的顯色劑(熒光素,、酶、金屬離子,、同位素)顯色來(lái)確定組織細(xì)胞內(nèi)抗原(多肽和蛋白質(zhì)),,對(duì)其進(jìn)行定位、定性及定量的一項(xiàng)技術(shù),。作為WB的兄弟,,IHC也本著蛋白實(shí)驗(yàn)家族一貫的傳統(tǒng),我的實(shí)驗(yàn)流程和方法不難,,但是想做出漂亮的染色結(jié)果卻不容易,,有條件的實(shí)驗(yàn)室可能都會(huì)把這個(gè)實(shí)驗(yàn)外包吧,但是個(gè)人認(rèn)為,,IHC是我們必須要掌握的一項(xiàng)技能,,動(dòng)手學(xué)一下還是挺有意思的,我們以石蠟組織切片為例:


1) 標(biāo)本固定

固定的目的:1,、使細(xì)胞內(nèi)的蛋白質(zhì)凝固,,減少或終止細(xì)胞內(nèi)分解酶的反應(yīng);2、防止組織細(xì)胞自溶,,保存組織或細(xì)胞內(nèi)的抗原性,,使抗原不失活,不發(fā)生彌散,。


IHC免疫組化,固定組織時(shí),,必須有足夠的固定液,,一般為組織塊體積的10~15倍。


固定用的容器必須足夠大,,組織材料不要太多,,可以根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要切成米粒大小,大小宜為1.0cm X l.0 cm X 0.2cm,,組織太大,,內(nèi)部得不到充分固定,會(huì)導(dǎo)致組織結(jié)構(gòu)破壞,,增加非特異染色,,還浪費(fèi)試劑。同時(shí)避免組織中的水分滲出而影響固定液的濃度,。組織取材后應(yīng)立即固定,,否則,組織易收縮變形,,并發(fā)生自溶現(xiàn)象,。組織固定后,因固定液滲到組織中,,所以必須徹底沖洗,,除去固定液,否則會(huì)影響下一步的脫水,。


2) 脫水,、石蠟包埋和制片

用乙醇(由低到高)充分脫水,對(duì)于一些質(zhì)地易脆的組織(如肝,、脾等),,注意不要在高濃度酒精里的停留過(guò)長(zhǎng)時(shí)間。


組織浸蠟時(shí),,一般選用56℃~58℃熔點(diǎn)的石蠟,,浸蠟溫度最好不超過(guò)60℃,防止抗原的損失,。


包埋時(shí)的操作就考驗(yàn)熟練度了,。選擇好角度后,動(dòng)作要迅速,這樣才能保證切片時(shí)切面完整,。但是切片時(shí)則要控制好速度,,快慢適宜,同時(shí)選用完整的刀片,,防止蠟帶出現(xiàn)劃痕,。


3)脫蠟和水化

待組織恢復(fù)到正常狀態(tài),暴露出抗原與一抗結(jié)合,。如果脫蠟和水化做得不完全,,會(huì)使后期結(jié)果產(chǎn)生非特異性背景著色。脫蠟就是給石蠟切片“脫衣服”的過(guò)程,,即,,用二甲苯將石蠟從切片上“脫”下來(lái),總共脫3次,,每次5min,。水化,也就是說(shuō)復(fù)水的目的就是利用乙醇的雙溶性,,使得切片跟后續(xù)的水溶性實(shí)驗(yàn)體系相容,。這一步中,我們使用100%乙醇和95%乙醇各洗切片2次,,每次10min,。


4) 抗原修復(fù)

抗原修復(fù)是IHC中極為重要的一步,組織在甲醛或多聚甲醛浸泡固定過(guò)程中,,會(huì)發(fā)生了蛋白之間交聯(lián)及醛基的封閉作用,,從而掩蓋抗原決定簇。所以抗原修復(fù)是為了使胞內(nèi)抗原決定族重新暴露出來(lái),,提高抗原檢測(cè)率,。


常用的修復(fù)方法包括高壓加熱修復(fù)、微波修復(fù)和胰酶修復(fù),。其中高壓加熱修復(fù)這一方法簡(jiǎn)便易操作,,效果也更好。


使用高壓加熱修復(fù)時(shí),,要注意修復(fù)的溫度和時(shí)間,,溫度越高修復(fù)時(shí)間越短。修復(fù)結(jié)束后室溫冷卻,,讓蛋白自然復(fù)性,。同時(shí),為了防止高溫時(shí)液體揮發(fā),,對(duì)切片造成不可逆的損傷,,應(yīng)盡量使用過(guò)量的抗原修復(fù)液,。 


5) 滅活內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素

免疫組化反應(yīng)容易受到內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素的影響,滅活內(nèi)源性過(guò)氧化物酶一般用3%過(guò)氧化氫,。滅活約10 min左右,,用甲醇配制過(guò)氧化氫更適合于保護(hù)抗原和固定組織。此時(shí)類(lèi)似于一張濕轉(zhuǎn)后的western blot膜,。


6)血清封閉

為了防止一抗的非特異性結(jié)合,,造成假陽(yáng)性,一般會(huì)采用BSA,、羊血清等封閉這些位點(diǎn),,封閉血清一般是和二抗同一動(dòng)物來(lái)源的,室溫封閉10-30 min,。


(第一次做免疫組化忘記封閉的結(jié)果)

 

7) 一抗和二抗?jié)舛群头跤龝r(shí)間

不同的一抗?jié)舛龋跤龝r(shí)間和溫度等對(duì)染色結(jié)果都會(huì)有不同,。在4℃下,,反應(yīng)緩慢,背景較淺,;而37℃反應(yīng)較快,,時(shí)間較短;室溫介于前兩者之間,,一般情況下,,會(huì)選擇室溫孵育就可以。二抗一般室溫孵育30 min,。


8) 切片清洗(浸洗,、沖洗和漂洗)

為了防止一抗、二抗等殘留而引起非特異性染色,,建議使用洗瓶沖洗 每次30s,,清洗3 次,可用TBST單獨(dú)清洗一抗孵育后,。清洗中要注意每個(gè)標(biāo)本單獨(dú)沖洗,,以防造成污染,同時(shí)沖洗力度溫和,,防止脫片,。


9) DAB顯色

DAB顯色時(shí)間不是固定的,可以通過(guò)顯微鏡下觀察,,控制顯色時(shí)間,,鏡下觀察出現(xiàn)特異性染色較強(qiáng)而背景著色較淺時(shí)即可沖洗。


如果DAB幾秒或幾十秒就會(huì)出現(xiàn)很深的棕褐色,,有可能是由于一抗?jié)舛冗^(guò)高,,需要適當(dāng)下調(diào)抗體濃度,;若很短時(shí)間就出現(xiàn)深背景,有可能是非特異性蛋白封閉不全,,需要延長(zhǎng)封閉時(shí)間,;若果DAB顯色時(shí)間超過(guò)十分鐘才出現(xiàn)陽(yáng)性染色,可能是一抗體濃度過(guò)低或者封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng),。


對(duì)于較弱的DAB顏色可以采取增強(qiáng)方法,,比如可以選擇加入硫酸銅。

 

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