做過(guò)病理實(shí)驗(yàn)的人都知道,，實(shí)驗(yàn)看似容易，但真想把它做好,，還是需要花上很長(zhǎng)一段時(shí)間去積累和摸索經(jīng)驗(yàn),。我從事病理實(shí)驗(yàn)已有 6 年多了，在這段時(shí)間里,，我做過(guò)許許多多病理相關(guān)實(shí)驗(yàn),，剛開(kāi)始啥也不懂，一味按照網(wǎng)上操作流程來(lái)做,，但做的結(jié)果往往并不是十分理想,，最終結(jié)果未能達(dá)到預(yù)期的效果。經(jīng)過(guò)一段時(shí)間的瀏覽和學(xué)習(xí),，在論壇內(nèi)學(xué)習(xí),、請(qǐng)教，并結(jié)合實(shí)踐操作,，我經(jīng)歷了初級(jí)——查找資料和摸索方法,；中級(jí)——問(wèn)題求助和不斷總結(jié)；高級(jí)——難題解答和經(jīng)驗(yàn)分享這三個(gè)階段,，也學(xué)到了不少知識(shí),，積累了很多寶貴經(jīng)驗(yàn)，與大家一起分享,。

一,、石蠟切片和冰凍切片的比較？

1.要求做冰凍切片的不一定能做石蠟切片,，這是我向一老師請(qǐng)教得出的結(jié)論,。因?yàn)樽魇炃衅瑫r(shí)要高溫烤片，可能會(huì)破壞組織的抗原性,，如果組織的抗原性較穩(wěn)定,，則可作石蠟切片；但是要求做石蠟切片的,，可作冰凍切片,。

2.冰凍切片的優(yōu)點(diǎn)是能夠較好的保存組織的抗原免疫活性，做免疫組化時(shí)不需抗原修復(fù)這一步,。缺點(diǎn)是細(xì)胞內(nèi)易形成冰晶而破壞細(xì)胞結(jié)構(gòu),，可能會(huì)使抗原彌散；切片厚度較石蠟的厚，做的片子沒(méi)石蠟的漂亮,。當(dāng)你買一抗時(shí),，目錄上都寫著做什么樣的切片，如果它寫著只能做冰凍,，就不能做石蠟,，如寫著兩者都可，那就都能做,。

3.石蠟切片的優(yōu)點(diǎn)是可以保持組織細(xì)胞的形態(tài)結(jié)構(gòu),，且容易存放在室溫，而冰凍切片比較麻煩,，一定要存在 -80oC 的低溫冰箱中,，尤其是用來(lái)做原位雜交的切片，為了防止 RNA 降解,，保存一貫很重要。由于石蠟切片可以切到 4 μm 左右,，所以原位雜交探針容易滲透到組織中去,，容易成功，而且得到的顏色/形態(tài)都較冰凍切片好,。

二,、一抗的選擇要點(diǎn)和技巧是什么？

1.單克隆和多克隆抗體的選擇,。由一種克隆產(chǎn)生的特異性抗體叫做單克隆抗體,。單克隆抗體能目標(biāo)明確地與單一的特異抗原決定簇結(jié)合，就像導(dǎo)彈精確地命中目標(biāo)一樣,。另一方面,，即使是同一個(gè)抗原決定簇,，在機(jī)體內(nèi)也可以由好幾種克隆來(lái)產(chǎn)生抗體，形成好幾種單克隆抗體混雜物,，稱為多克隆抗體。在抗原抗體反應(yīng)中,，一般單克隆抗體特異性強(qiáng),，但親和力相對(duì)小，檢測(cè)抗原靈敏度相對(duì)就低,；而多克隆抗體特異性稍弱,，但抗體的親和力強(qiáng)，靈敏度高,，但易出現(xiàn)非特異性染色（可以通過(guò)封閉等避免）,。

2.應(yīng)用范圍的選擇。有的一抗只能用于 WB ( Western blotting）或免疫組化,、免疫熒光,、免疫沉淀等,；甚至表明石蠟切片或冰凍切片。

3.種屬反應(yīng)性的選擇,。這一點(diǎn)很重要,，表明這種抗體可能存在種屬差異，且這種抗體適合檢測(cè)哪種種屬動(dòng)物體內(nèi)的抗原,。

4.種屬來(lái)源,，一般兔來(lái)源的多是多克隆,；而小鼠來(lái)源的多是單克隆,，但也有另外。根據(jù)此來(lái)源來(lái)選擇相應(yīng)的二抗,。

5.生產(chǎn)廠家的選擇,。如 santa Cruz 公司抗體一般 1 ml，價(jià)格 2100 元左右,；而 chemicon 公司一抗一般 100 μl,，價(jià)格 2800 元左右。這兩個(gè)廠家的同一種抗體,，它的實(shí)際效價(jià)穩(wěn)定是不同的,，我一般用后者抗體做免疫組化效果較好，而前者做 WB 效果還可以,。

三,、在什么情況下使用 Triton-X100？

1.Triton X-100 化學(xué)名稱為聚乙二醇辛基苯基醚,，是一種去污劑,。在免疫組織化學(xué)(10 μm 以上厚切片) 和免疫細(xì)胞化學(xué)中一般用 Triton X-100 作為細(xì)胞通透劑，在膜上打孔,。

2.其作用原理：Triton X-100 可以溶解細(xì)胞膜,、細(xì)胞核膜、細(xì)胞器膜上的脂質(zhì)而使抗體及大分子結(jié)構(gòu)的物質(zhì)進(jìn)入胞漿和胞核內(nèi),，故在細(xì)胞免疫組化時(shí)尤為推薦使用,，這樣抗體就能順利進(jìn)入胞內(nèi)與相應(yīng)抗原結(jié)合。

3.Triton X-100 既是一種表面活性劑,，也有抗氧化作用,。

四、封閉血清的選擇原則是什么,？

1.膜上或切片上有剩余的位點(diǎn)可以非特異性吸附抗體,，造成后續(xù)結(jié)果的假陽(yáng)性。

2.封閉血清一般是和二抗同一來(lái)源的，血清中動(dòng)物自身的抗體,，預(yù)先能和組織中有交叉反應(yīng)的位點(diǎn)發(fā)生結(jié)合,，否則在后面的步驟中如果和二抗發(fā)生結(jié)合，會(huì)造成背景,。

3.也可以用小牛血清,、BSA、羊血清等,，但不能與一抗來(lái)源一致,。

五、抗體孵育條件的比較,？

1.一抗孵育溫度有幾種：4oC,、室溫、37oC,，其中 4oC 效果最佳,；孵育時(shí)間：這與溫度、抗體濃度有關(guān),，一般 37oC 1-2 h,，而 4oC 過(guò)夜和從冰箱拿出后 37oC 復(fù)溫 45 min。

2.二抗一般室溫或 37oC 30 min - 1 h,，具體時(shí)間需要摸索。

六,、一抗 4℃ 孵育后為什么要進(jìn)行 37℃復(fù)溫,？

1.一方面，防止切片從 4oC 直接放入 PBS 易脫片,。

2.另一方面,，使抗原抗體結(jié)合更穩(wěn)定。一般不需要,，但對(duì)表達(dá)較弱的抗原可能有用,，4oC 和 37oC 時(shí)分子運(yùn)動(dòng)方式不同，前者分子碰撞機(jī)率和運(yùn)動(dòng)速度小于后者,后者結(jié)合更快,，但敏感性也提高了并易造成非特異染色,。

3.其實(shí)，我更贊同后一種說(shuō)法,，因?yàn)槲覈L試把肝臟或睪丸片子從 4 ℃過(guò)夜拿出后,，直接用 PBS 洗沒(méi)發(fā)生過(guò)脫片現(xiàn)象。事實(shí)勝于雄辯,。

七,、DAB 顯色時(shí)間如何把握？

1.DAB 顯色時(shí)間不是固定的，主要由顯微鏡下控制顯色時(shí)間,，到出現(xiàn)淺棕色本底時(shí)即可沖洗,。

2.DAB 顯色時(shí)間很短（如幾秒或幾十秒）就出現(xiàn)很深的棕褐色，這很可能說(shuō)明你的抗體濃度過(guò)高或抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng),，需要下調(diào)抗體濃度或縮短抗體孵育時(shí)間,。

3.若很短時(shí)間就出現(xiàn)背景很深，還有可能是你前面的封閉非特異性蛋白不全,，需要延長(zhǎng)封閉時(shí)間,。

4.DAB 顯色時(shí)間很長(zhǎng)（如超過(guò)十幾分鐘）才出現(xiàn)陽(yáng)性染色，一方面可能說(shuō)明你的抗體濃度過(guò)低或孵育時(shí)間過(guò)短（最好一抗 4oC 過(guò)夜）,；另一方面就是封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng),。

八、免疫組化結(jié)果如何分析,？

1.陽(yáng)性著色細(xì)胞計(jì)數(shù)法,。在 40 * 光鏡下，隨機(jī)選擇不重疊的 10 個(gè)視野,，人工或機(jī)器計(jì)數(shù)陽(yáng)性著色細(xì)胞,，每組 3-6 張不同動(dòng)物組織切片，然后進(jìn)行組間比較即可,。

2.灰密度分析法,。通過(guò)在不同組別和不同動(dòng)物組織切片上選擇相同區(qū)域、相同條件下用 image j 進(jìn)行灰密度分析,，然后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析即可,。

3.評(píng)分法。通過(guò)在光學(xué)顯微鏡下對(duì)組織切片分別按染色程度（0-3 分為陰性著色,、淡黃色,、淺褐色、深褐色）,、陽(yáng)性范圍進(jìn)行評(píng)分（1-4 分為 0-25%,、26-50%、51-75%,、76-100%）,，最終可以分?jǐn)?shù)相加，再進(jìn)行比較,。

對(duì)于以上這幾種方法,，各有利弊，請(qǐng)細(xì)心選擇,。要想得到正確結(jié)果的前提是你要做出著色均勻,、背景很淺的高質(zhì)量切片,。

九、在什么情況下進(jìn)行組織抗原修復(fù),，抗原修復(fù)的條件是什么,？

1.由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過(guò)程中，發(fā)生了蛋白之間交聯(lián)及醛基的封閉作用,，從而失去抗原性,。通過(guò)抗原修復(fù)，使得細(xì)胞內(nèi)抗原決定族重新暴露,，提高抗原檢測(cè)率,。

2.修復(fù)方法從強(qiáng)到弱一般分為三種，高壓修復(fù),、微波修復(fù),、胰酶修復(fù)。修復(fù)液也分為若干種（具體的可以查閱相關(guān)資料,，大量的：中性的,、高 pH 的等）。

3.微波修復(fù),，我們一般用 6 min * 4 次,，效果不錯(cuò)。

十,、內(nèi)源性過(guò)氧化物酶的滅活時(shí)間和濃度是什么,？

1.一般 3% 過(guò)氧化氫滅活時(shí)間短點(diǎn)，可以 10 min 左右,；而 0.3% 過(guò)氧化氫則可以適當(dāng)延長(zhǎng)封閉時(shí)間,，一般 10-30 min。

2.用甲醇配置過(guò)氧化氫比雙蒸水或 PBS 好在保護(hù)抗原和固定組織作用,，過(guò)氧化氫孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)易引起脫片。

3.現(xiàn)用現(xiàn)配,，配好后 4oC 避光保存,。

十一、如何才能充分脫蠟,？

1.蠟不溶于水,，如果脫蠟不干凈，少許蠟存留于切片上,，將會(huì)引起染色不均勻,、陽(yáng)性物時(shí)隱時(shí)現(xiàn)、真假難辨,、背景染色增加等,。為了解決上述的問(wèn)題,，切片在染色前必須徹底脫蠟，目前用于脫蠟的試劑主要是二甲苯,，因它脫蠟力強(qiáng),，脫蠟時(shí)間較短；

2.脫蠟的時(shí)間要根據(jù)季節(jié),，室溫和試劑的新鮮謀面是在不同,。如果在夏天，室溫較高,，脫蠟試劑也新鮮,，則脫蠟時(shí)間不需很多，3-5 min 就已足夠,。如果在冬天,，室溫較低，脫蠟試劑也較陳舊,，則脫蠟時(shí)間需要延長(zhǎng),，10-20 min 或更長(zhǎng)。

3.當(dāng)天切的切片,，燒烤 2 小時(shí)后進(jìn)行染色,，切片帶有溫度進(jìn)行脫蠟這將可加速脫蠟的過(guò)程，如果預(yù)先切好烤好的切片,，在染色前,，還必須對(duì)切片進(jìn)行加溫 10-20 min，然后再行脫蠟,，這樣脫蠟速度加快,，效果會(huì)更好。

總之,，操作時(shí)應(yīng)根據(jù)不同的季節(jié),，不同的室溫，不同的試劑來(lái)決定,，脫蠟的時(shí)間,，原則上是要徹底、干凈,、完全地脫去切片上的蠟,。

十二、如何最大限度地降低組織非特異性染色,？

1.縮短一抗/二抗孵育時(shí)間,、稀釋抗體來(lái)控制。這是最重要的一條,；

2.一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,，建議用單克隆抗體看看,；

3.內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高（含血細(xì)胞多的組織）,，需要通過(guò)延長(zhǎng)滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來(lái)降低背景染色,；

4.非特異性組分與抗體結(jié)合，這需要通過(guò)延長(zhǎng)二抗來(lái)源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來(lái)加強(qiáng)封閉效果,；

5.縮短 DAB 孵育時(shí)間或降低 DAB 濃度/過(guò)氧化氫濃度等,；

6.適當(dāng)增加 PBS 沖洗次數(shù)和浸洗時(shí)間，在一抗,、二抗或 SP 孵育之后的浸洗尤為重要,；

7.防止標(biāo)本染色過(guò)程中出現(xiàn)干片，這容易增強(qiáng)非特異性著色,。

十三,、蘇木素復(fù)染時(shí)間的把握？

1.蘇木素復(fù)染時(shí)間要看當(dāng)時(shí)的室溫,、溶液的新舊,、目標(biāo)抗原的定位等情況，一般數(shù)秒-數(shù)分鐘,。不過(guò)這個(gè)如果染色不理想可以補(bǔ)救的,。即：染色深則分化時(shí)間稍長(zhǎng)些即可；染色淺則再置于蘇木素中染色即可,。

2.鹽酸酒精是分化,，氨水是返蘭。作用不同,。片子復(fù)染完后流水振洗,，然后置于鹽酸酒精中數(shù)秒（動(dòng)作一定要快）后拿出流水振洗，在放入氨水中返蘭即可,。

3.如果分化的顏色過(guò)淺,，可以復(fù)置于蘇木素中染色。

十四,、PBS 的清洗方式選擇,、次數(shù)和時(shí)間的選擇？

1.單獨(dú)沖洗,，防止交叉反應(yīng)造成污染?！?/p>

臨床上每天檢測(cè)的病例很多,，所用的抗體種類及項(xiàng)目也多，如果在加入一抗孵育完后,，將它們?cè)谝粋€(gè)缸內(nèi)洗,，這樣就會(huì)造成交叉污染,，影響最后的結(jié)果。正確的做法是單獨(dú)地進(jìn)行沖洗,，沖洗的 PBS 為一次性,，保證切片沒(méi)有相互交叉污染的機(jī)會(huì)。

2.溫柔沖洗,，防止切片的脫落,。

沖洗切片，取出切片,，將 PBS 從上輕輕地沖洗,，讓 PBS 自上而下流下來(lái)，不要拿起切片將 PBS 對(duì)準(zhǔn)切片沖洗,，這樣由于沖出的 PBS 有一定的沖擊力,，很容易使切片周邊引起松動(dòng)，導(dǎo)致切片的脫落,。

3.沖洗的時(shí)間要足夠,，才能徹底洗去結(jié)合的物質(zhì)。

沖洗切片有人提出用微振蕩器振染,，振下未結(jié)合的各種物,，使之不產(chǎn)生背景，此種做法一是浪費(fèi)時(shí)間,，二是很容易導(dǎo)致切片的脫落,。切片的沖洗據(jù)實(shí)踐認(rèn)為，用一小燒杯柔和地于切片上沖洗,，就能徹底沖洗去未結(jié)合的物質(zhì),，無(wú)需附加其它條件，沖洗好于切片上再注入 PBS,，持續(xù) 2 min 左右就完全足夠了,。

4.PBS 的 pH 和離子強(qiáng)度的使用和要求。

劉彥仿指出：中性及弱鹼性條件（pH7-8）有利于免疫復(fù)合物的形成,，而酸性條件則有利于分解,；低離子強(qiáng)度有利于免疫復(fù)合物的形成，而高離子強(qiáng)度則有利于分解,。我們目前常用的 PBS 的 pH 在 7.4-7.6 ,，濃度是 0.01 M，根據(jù)本室十幾年來(lái)的使用情況,，認(rèn)為該溶液價(jià)格便宜配制方面,，使用效果好。

5.常用試劑的配制和使用,。

在免疫組織化學(xué)的染色過(guò)程中,，用得最多的試劑就是緩沖液,，因?yàn)榍衅谡麄€(gè)染色中，抗體的加,、換,、切片的沖洗，DAB 的配制都離不開(kāi)緩沖液,?？梢?jiàn)緩沖液在整個(gè)染色中都起至關(guān)鍵的作用，緩沖液的過(guò)酸或偏堿,，都將影響染色的結(jié)果,。

十五、脫片產(chǎn)生的原因和如何防止脫片,？

1.多聚賴氨酸玻片質(zhì)量的問(wèn)題,。我原先是買的，后面補(bǔ)做第二批時(shí)用的病理科老師自己做的片子,，要好一點(diǎn),。

2.組織切的不好，切片機(jī)的問(wèn)題例如比較老的舊的機(jī)器切得厚或者不均勻,，或者切片者手法不好等,。

3.組織的問(wèn)題，我用的組織癌癥的很多,，越是癌癥組織有壞死之類越容易脫,。

4.沒(méi)烤好，時(shí)間短溫度不夠之類,。

5.操作的時(shí)候甩的太猛了,，有脫片嫌疑的片子最好不甩或輕輕甩，用衛(wèi)生紙從邊緣上慢慢吸水,。

6.修復(fù)的問(wèn)題：抗原修復(fù)的時(shí)候高壓時(shí)間過(guò)長(zhǎng)了,，或者放進(jìn) 100oC 的修復(fù)液時(shí)手法不好，咚的一聲就丟進(jìn)去了,，這樣超容易脫片,。此外，用 EDTA 修復(fù)比檸檬酸容易脫片,，但是你要用到 EDTA 的時(shí)候也沒(méi)辦法,，只有從另外的問(wèn)題上著手。

7.此外,，一旦見(jiàn)到有組織漂起來(lái)操作就更加要謹(jǐn)慎,，用 PBS 的時(shí)候盡量用泡的，不要沖?；旧习堰@些方面都注意到了，能改善的盡量改善,，脫片可以減少很多,。

十六、背景染色較深的原因有哪些,？

1.抗體濃度過(guò)高：一抗?jié)舛冗^(guò)高是常見(jiàn)的原因之一,。解決辦法是，每次使用新抗體前應(yīng)當(dāng)對(duì)其工作濃度進(jìn)行測(cè)試,，使每一抗體個(gè)體化,，找到適合自己實(shí)驗(yàn)室的理想工作濃度，既使是即用型的抗體也應(yīng)如此,，不能只簡(jiǎn)單的按說(shuō)明書(shū)進(jìn)行染色,。

2.抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或溫度較高：解決辦法是，嚴(yán)格執(zhí)行操作規(guī)程,，最好隨身佩帶報(bào)時(shí)表或報(bào)時(shí)鐘,，及時(shí)提醒，避免因遺忘而造成時(shí)間延長(zhǎng)?，F(xiàn)在流行的二步法（Polymer）敏感性很高,，要求一抗孵育的時(shí)間不是傳統(tǒng)的 1 h，而是 30 min,，因此,，要根據(jù)染色結(jié)果進(jìn)行調(diào)整。

3.DAB 變質(zhì)和顯色時(shí)間太長(zhǎng)：DAB 最好現(xiàn)用現(xiàn)配,，如有沉渣應(yīng)進(jìn)行過(guò)濾后再用,。配制好的 DAB 不應(yīng)存放時(shí)間太長(zhǎng)，因?yàn)樵跊](méi)有酶的情況下,，過(guò)氧化氫也會(huì)游離出氧原子與 DAB 產(chǎn)生反應(yīng)而降低 DAB 的效力,，未用完的 DAB 存放在冰箱里幾天后再用這種似乎節(jié)約的辦法是不可取的。DAB 的顯色最好在顯微鏡下監(jiān)控,，達(dá)到理想的染色程度時(shí)立即終止反應(yīng),。不過(guò)當(dāng)染色片太多時(shí)或用染色機(jī)時(shí)，這樣做似乎不現(xiàn)實(shí),，但至少應(yīng)對(duì)一些新的或少用的抗體顯色時(shí)進(jìn)行監(jiān)控,，避免顯色時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。

4.組織變干：修復(fù)液溢出后未及時(shí)補(bǔ)充液體,、染色切片太多,、動(dòng)作太慢、忘記滴液、滴液流失等都是造成組織變干的原因,。解決的辦法是操作要認(rèn)真仔細(xì),，采用 DAKO 筆或 PAP Pen 在組織周圍畫圈，可以有效的避免液體流失,，也能提高操作速度,。

5.切片在緩沖液或修復(fù)液中浸泡時(shí)間太長(zhǎng)（大于 24 h）：原因上不清楚，但現(xiàn)象存在,。有的實(shí)驗(yàn)室喜歡前一天將切片脫蠟至修復(fù),，第二天加抗體進(jìn)行免疫組化染色，如果將裝有切片和修復(fù)液的容器放在 4oC 冰箱過(guò)夜,，對(duì)結(jié)果無(wú)明顯影響,，如果放在室溫，特別是炎熱的夏天,，會(huì)出現(xiàn)背景著色,，因此，不可存放時(shí)間太長(zhǎng),。

6.一抗變質(zhì),、質(zhì)量差的多克隆抗體：注意抗體的有效期，過(guò)期的抗體要么不顯色要么背景著色,。用新買的抗體時(shí)最好設(shè)立陽(yáng)性對(duì)照和用使用過(guò)的抗體作比較,。