今天給大家推出的是PBMC系列的最后一類細胞——巨噬細胞 關(guān)于巨噬細胞的內(nèi)容比較多,,今天只給大家介紹了人源巨噬細胞的相關(guān)內(nèi)容,下一期還會針對鼠源巨噬細胞進行介紹 透露一下下一期的大致內(nèi)容包括:小鼠各種來源(骨髓,、腹腔,、肺泡,、脂肪組織)巨噬細胞的分離及體外培養(yǎng),,以及巨噬細胞功能的評價 現(xiàn)在,先讓我們來了解一下與人巨噬細胞相關(guān)的知識 01巨噬細胞簡介巨噬細胞是一種廣泛分布于全身血液,、組織的免疫細胞,,起源自單核細胞,而單核細胞則又來源于骨髓中的前體細胞 作為單核吞噬細胞系統(tǒng)中的一部分,,巨噬細胞可以吞噬,、殺滅病原菌等異物;能夠分泌參與炎癥反應(yīng)的生物活性介質(zhì),;并且攝取并處理抗原,,并把抗原信息遞呈給淋巴細胞等 巨噬細胞在體內(nèi)分布廣泛,主要分布于疏松結(jié)締組織,、肝,、脾,、淋巴結(jié)、骨髓,、腦,、肺以及腹膜等處,并依其所在組織的不同而有不同的名稱 比如肝臟中枯否細胞,,骨髓中的破骨細胞,,大腦神經(jīng)組織中的小膠質(zhì)細胞等 圖1 巨噬細胞的來源及組織分布示意圖(圖片來自“閑談 Immunology”公眾號,侵刪) 02巨噬細胞極化巨噬細胞具有很強的可塑性,,可以從一種表型轉(zhuǎn)換為另一種表型 我們可能經(jīng)常聽說過巨噬細胞極化,,指的就是巨噬細胞在不同的誘導(dǎo)刺激條件下發(fā)生特定的表型分型 按照其活化狀態(tài)不同,主要可以分為M1型巨噬細胞(經(jīng)典激活巨噬細胞)和M2型巨噬細胞(替代活化巨噬細胞) 但值得注意的是,,巨噬細胞的這兩種分型并沒有絕對意義上的對立,,也即M1和M2表型并非相互排斥,而是經(jīng)常共存的,,因此不能簡單地認為它們是完全不同的巨噬細胞群體 巨噬細胞極化標志物通常以不同水平表達在不同分型的巨噬細胞上,,并且不同分型的巨噬細胞在特定條件下能發(fā)生轉(zhuǎn)化 圖2 特定條件下巨噬細胞的分型轉(zhuǎn)化[1] 圖3 組織修復(fù)、再生和纖維化中驅(qū)動主要巨噬細胞活化表型的機制[2]在體內(nèi)傷口愈合基因表達中,,巨噬細胞在早期階段表現(xiàn)出促炎 M1 分泌譜,,高能力呈遞抗原、產(chǎn)生白細胞介素IL-12 和IL-23,,抑制細胞增殖并造成組織損傷 在后期愈合階段,,巨噬細胞則轉(zhuǎn)變?yōu)榭寡?M2 基因表達譜,通過產(chǎn)生血管生成介質(zhì),,例如轉(zhuǎn)化生長因子-β (TGF-β),、血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)和表皮生長因子(EGF)等,促進炎癥消退和傷口愈合 下圖給出了人/鼠巨噬細胞M0,、M1和M2極化的標志物 圖4 巨噬細胞極化標志物[3]巨噬細胞的極化受到諸多因素的影響:體外受脂多糖(LPS)和/或干擾素(IFN-γ)等促炎因子刺激時,,巨噬細胞易發(fā)生M1型轉(zhuǎn)化,這也是體外誘導(dǎo)巨噬細胞發(fā)生M1極化的主要方法 此外,,M1型巨噬細胞還會分泌多種細胞因子,,包括IL-6、IL-12,、IL-1α以及TNF-α等 巨噬細胞體外受到IL-4,、IL-13等刺激時,,則容易發(fā)生M2型極化,其中,,TGF-β被認為是巨噬細胞M2表型維持中最重要的細胞因子之一 此外,,M2型巨噬細胞還可進一步分為四種亞群,包括M2a,、M2b,、M2c 下圖詳細描述了M1以及M2型巨噬細胞的不同生物學(xué)和生理學(xué)特征 圖5 在人和小鼠中觀察到的M1和M2巨噬細胞表型的不同生物學(xué)和生理學(xué)特征[4] 03人巨噬細胞體外培養(yǎng)巨噬細胞極化的體外研究,通常使用IFN-γ和LPS等TLR激動劑誘導(dǎo)M1型極化,,使用IL-4或IL-13等誘導(dǎo)M2型極化,,然后記錄基因表達、細胞表面標志物及蛋白質(zhì)含量和活性的變化 目前人巨噬細胞的體外培養(yǎng)主要由2種來源,,分別由無限增殖的單核細胞系THP-1或者原代分離的單核細胞誘導(dǎo)分化而來 1. THP-1細胞誘導(dǎo)分化THP-1細胞系是從一名患有急性單核細胞白血病的1歲小男孩的外周血中分離得到的,,自1980年建系以來,THP-1細胞被廣泛用于單核細胞和巨噬細胞相關(guān)的機制,、信號通路以及營養(yǎng)和藥物運輸?shù)妊芯恐?/p> THP-1細胞可被佛波酯(PMA)誘導(dǎo)分化為巨噬細胞M0 (1)然后可再通過LPS和/或IFN-γ誘導(dǎo)發(fā)生M1極化,,進而釋放出TNF-α、IL-6等細胞因子,,這一過程可作為典型的炎癥模型 (2)或者通過 IL-4 ,、IL-13和巨噬細胞集落刺激因子(M-CSF)誘導(dǎo)發(fā)生M2極化,分泌TGF-β,、IL-10等抑制性細胞因子,,這一過程則類似于炎癥后期的組織修復(fù)和重建 THP-1細胞誘導(dǎo)分化成巨噬細胞步驟: (1)將THP-1以5×105/孔接種到0.2%明膠包被的6孔細胞培養(yǎng)板中,5%CO2,,37℃恒溫培養(yǎng)過夜,;注:明膠包被實驗步驟將在后文中進一步說明,明膠可以促進巨噬細胞吸附,,該步驟也可直接在不包被明膠的普通6孔細胞培養(yǎng)板中進行 (2)PRMI-1640(含10%FBS)培養(yǎng)基中加入100 ng/mL PMA刺激THP-1細胞生長,,輕晃培養(yǎng)板至液體混勻,5%CO2,,37℃恒溫繼續(xù)培養(yǎng)48 h 待細胞貼壁后,,棄上清液,加入新鮮培養(yǎng)基維持細胞生長,,得到THP-1-Mφ 在PMA繼續(xù)存在的情況下,,誘導(dǎo)巨噬細胞極化 注:PMA誘導(dǎo)時間可以根據(jù)細胞形態(tài)變化進行初步判斷 文獻[5]指出,THP-1細胞經(jīng)185 ng/mL PMA培養(yǎng)6 h后即可進行下一步極化誘導(dǎo) (3)M1極化:IFN-γ(20 ng/mL) LPS(100 ng/mL)誘導(dǎo)48 h以上,;M2極化:IL-4(20 ng/mL) IL-13(20 ng/mL)誘導(dǎo)48 h以上 極化完成后,,細胞用不含刺激物和PMA的無血清RPMI-1640重懸,可以維持72 h極化表型[5] 后續(xù)可根據(jù)自己的實驗需求開展相關(guān)實驗 注:THP-1細胞經(jīng)佛波酯誘導(dǎo)處理48 h后,,由懸浮生長變成貼壁生長,,THP-1-Mφ高表達單核巨噬細胞特有的CD14和CD68分子,,細胞呈圓形或橢圓形,并有明顯的突觸,,對抗原攝取能力較弱 繼續(xù)分化為THP-1-M1/2后,,細胞表面出現(xiàn)明顯突起,可對病原體進行有效吞噬 并且從理論上說,,巨噬細胞屬于終末分化細胞,,不會再繼續(xù)增殖;同時巨噬細胞對胰酶不敏感,,消化巨噬細胞可嘗試用利多卡因或者直接用細胞刮刀 舉例:在這里,,和大家分享一篇文章,該文章介紹了PMA(100 nM)刺激THP-1細胞生長7天過程中細胞的變化情況: 圖6 PMA刺激培養(yǎng)7天THP-1細胞的變化情況[6]文章對該圖的解釋是:THP-1單核細胞在經(jīng)PMA共培養(yǎng)30 min左右即可粘附到基質(zhì)上,,在第一天可觀察到兩類細胞,第一類約占75-80%,,具有單核形態(tài)樣細胞,,在基質(zhì)上基本不鋪展(大小5-7 μm),細胞呈圓形,,核卵圓形(圖a),;細胞表面有小突起和褶皺(圖e),未觀察到肌動蛋白束(圖i) 這類細胞群在整個實驗過程中都存在,,但到第5-7天時,,其占比降至7%以下 在分化的第3天,單核細胞樣細胞的比例下降至28-35% 其余的細胞群是直徑為20-40 μm的非極化細胞(41-45%)和具有細長突起(50-80 μm)和卵圓形或腎形細胞核的極化細胞(20-30%)(圖b) 此時,,所有極化細胞都含有肌動蛋白束,,這些肌動蛋白團占據(jù)了整個細胞質(zhì),并沿細胞軸定向(圖j) 非極化細胞包含圓形位于細胞前緣區(qū)域的肌動蛋白束 這些細胞的表面不規(guī)則,,有褶皺和球形或滴狀突起(圖f) 在分化第5天,,具有長突起的直徑為60-120 μm的極化細胞(圖c)占優(yōu)勢(75-77%) 非極化細胞(15-17%)的大小增加到30-70 μm 細胞核大多呈腎形或多形性,這是巨噬細胞的典型特征 極化細胞包含沿突起平行排列的肌動蛋白束(圖k和l) 非極化細胞在前緣保留肌動蛋白微絲束 梭形細胞表面形成長褶皺(圖g),,而非極化細胞表面有褶皺,、單個突起和褶皺(圖g和h) 到分化第7天,細胞的形態(tài)特征基本沒有變化,,表明細胞已獲得穩(wěn)定的形態(tài)表型(圖d,、h和l) 研究中PMA(100 nM)引起THP-1巨噬細胞形態(tài)類型發(fā)生連續(xù)變化,進而作者認為巨噬細胞分化具有三個主要的可識別階段:初始階段(單核細胞樣細胞),、中間階段(非極化細胞)和終末階段(極化細胞) 此外,,除了細胞形態(tài)變化,文章還描述了該過程中細胞周期,、細胞因子表達,、細胞吞噬活性的變化,,大家感興趣的可以仔細閱讀文獻6 2. PBMC來源的巨噬細胞的分離和培養(yǎng) 圖7 人巨噬細胞分離和誘導(dǎo)分化流程示意圖(1)人PBMC分離:PBMC分離步驟見CD107a:免疫細胞活性評價的又一利器——CD107a 流式檢測方法與知識大放送一文 (2)單核細胞分離A:陰選——如利用美天旎的單核細胞分離試劑盒(Pan Monocyte Isolation Kit, Human),可以從人PBMC中分離出未吸附的單核細胞 該試劑盒是一種間接磁性標記系統(tǒng),,可以同時富集典型的CD14 CD16-,,非經(jīng)典的CD14 CD16 ,以及中間類型的CD14 CD16 三種類型的單核細胞 非單核細胞,,如T細胞,、NK細胞、B細胞,、樹突狀細胞和嗜堿性粒細胞,,使用生物素結(jié)合抗體和抗生物素微球的混合物進行間接磁性標記 通過去除磁性標記物可以獲得高純度的未標記單核細胞 具體步驟大家根據(jù)該試劑盒說明書進行操作即可 注:用試劑盒來分選單核細胞,效果自然是好,,但硬傷是傷錢呀,!小小的試劑盒就要好幾千大洋,導(dǎo)師怎么可能給我這個菜鳥買呢,?接下來,,給大家介紹兩種經(jīng)濟實惠的做法,不需要看導(dǎo)師的臉色,,我們就能輕易分離出單核細胞 B:明膠法分離單核細胞① 明膠包被細胞培養(yǎng)瓶:向一次性75 cm2的塑料培養(yǎng)瓶中加入10 mL 2%的明膠溶液,,覆蓋整個底面,置于37℃干燥箱中約2 h,,吸出培養(yǎng)瓶中多余的明膠溶液,,置于37℃干燥箱至少2天才可使用 培養(yǎng)瓶經(jīng)此處理可以使用1個月之久 ② 用RPMI-1640培養(yǎng)基調(diào)整分離后的PBMC密度至1×106/mL,加入10 mL至細胞培養(yǎng)瓶中,,置于5%CO2,,37℃條件下培養(yǎng)2 h,然后移除非黏附的細胞 用預(yù)熱的PBS溶液小心洗滌未粘附的細胞,,棄去液體后,,向培養(yǎng)皿中加入10 mL含10% FBS的RPMI-1640培養(yǎng)基,置于5%CO2,,37℃條件下培養(yǎng) 培養(yǎng)1天后,,可見大部分細胞脫落或者容易脫落,使用細胞刮刀將其刮下后,,轉(zhuǎn)移至離心管中,,室溫條件下250 g離心10 min,加入新鮮的培養(yǎng)基進行培養(yǎng) 注:明膠法分離單核細胞的原理可能是:單核-巨噬細胞能夠分泌一種與細胞膜有聯(lián)系的纖連蛋白,,這種蛋白能夠結(jié)合到各種類型的膠原上,,也包括變性的膠原——明膠 使用細胞刮刀會對細胞造成較大的機械損傷,也可以使用10 mM EDTA的無Ca2 、Mg2 的PBS溶液進行消化,,大約10-15 min可以觀察到細胞松散脫落 然后使用無Ca2 ,、Mg2 的PBS溶液洗滌細胞一次 若用該方法消化單核細胞,無需按照上述步驟將細胞再培養(yǎng)1天 C:貼壁法分離單核細胞 關(guān)于單核細胞的分離,,還有更加簡單粗暴的做法,,那就是直接用無血清RPMI-1640培養(yǎng)基(補充2 mM的L-谷氨酰胺,100 U/mL青霉素以及100 μg/mL鏈霉素)貼壁培養(yǎng)PBMC(1×106/mL)2 h,,然后小心去除懸浮細胞,,以PBS溶液洗滌2次剩余的貼壁細胞即為單核細胞 缺點是該方法獲得的單核細胞純度較低 至此,我們已經(jīng)從PBMC中分離出單核細胞 注:以RPMI-1640完全培養(yǎng)基培養(yǎng)這類單核細胞7天,,中間不換液并且不再補充外源性的物質(zhì),,可以誘導(dǎo)單核細胞自發(fā)分化形成M0型巨噬細胞[7] (3)巨噬細胞分化誘導(dǎo) GM-CSF和M-CSF作為巨噬細胞誘導(dǎo)的啟動和激活因子,可分別誘導(dǎo)單核細胞向M1型(抗炎)以及M2型(抗炎)巨噬細胞分化,,促進其細胞因子分泌能力 將分離得到的單核細胞用含10 mL GM-CSF(10 ng/mL)或含M-CSF(25 ng/mL)的RPMI-1640(10% FBS)繼續(xù)培養(yǎng),,培養(yǎng)時控制細胞密度在1×106/mL左右 培養(yǎng)7天后,細胞形態(tài)發(fā)生明顯變化,,如下圖: 為了更好地促進巨噬細胞的極化,,我們可以在培養(yǎng)基中添加多種促極化因子,補充LPS(10 ng/mL) 人IFN-γ(5 U/mL)可以促進巨噬細胞的M1型極化,,此時細胞多呈紡錘形;補充IL-4(20 ng/mL),、 IL-10(20 ng/mL)或地塞米松(10 μM)可以促進巨噬細胞M2型極化,,此時細胞多呈圓形 如下圖所示[8]: 文獻6的作者總結(jié)了不同培養(yǎng)方法對最后巨噬細胞極化以及標志物表達的影響,大家可以根據(jù)自己需要的條件進行選擇性設(shè)計培養(yǎng)方案 此外,,還有文章在獲得單核細胞后對其連續(xù)培養(yǎng)7天,,隨后使用LPS(1 μg/mL) 人IFN-γ(10 ng/mL)孵育48 h誘導(dǎo)M1極化(細胞多呈紡錘形);使用IL-4(20 ng/mL) IL-13(5 ng/mL)培養(yǎng)48 h誘導(dǎo)M2極化(細胞多呈圓形),,誘導(dǎo)結(jié)果如下圖[7] 極化完成后,,細胞用不含血清和PMA的無血清RPMI-1640重懸,可維持72 h的表型 具體實驗中各種刺激物的誘導(dǎo)濃度和時間還需要大家進行預(yù)實驗進行分析和確定 04參考文獻 1. Funes, S.C., et al.,Implications of macrophage polarization in autoimmunity. Immunology, 2018. 154(2): p. 186-195. 2. Wynn, T.A. and K.M. Vannella, Macrophages in Tissue Repair, Regeneration, and Fibrosis. Immunity, 2016. 44(3): p. 450-462. 3. Boutilier, A.J. and S.F. Elsawa, Macrophage Polarization States in the Tumor Microenvironment. International Journal of Molecular Sciences, 2021. 22(13). 4. Shapouri-Moghaddam, A., et al., Macrophage plasticity, polarization, and function in health and disease. Journal of Cellular Physiology, 2018. 233(9): p. 6425-6440. 5. Tedesco, S., et al.,Convenience versus Biological Significance: Are PMA-Differentiated THP-1 Cells a Reliable Substitute for Blood-Derived Macrophages When Studying Polarization? Frontiers In Pharmacology, 2018. 9: p. 71. 6. Kurynina, A.V., et al., Plasticity of Human THP-1 Cell Phagocytic Activity during Macrophagic Differentiation. Biochemistry. Biokhimiia, 2018. 83(3): p. 200-214. 7. Tedesco, S., et al.,Phenotypic activation and pharmacological outcomes of spontaneously differentiated human monocyte-derived macrophages.Immunobiology, 2015. 220(5): p. 545-554.8. Vogel, D.Y.S., et al., Human macrophage polarization in vitro: maturation and activation methods compared. Immunobiology, 2014. 219(9): p. 695-703. 以上就是今天和大家分享的所有內(nèi)容啦,,我們下期再見 |
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