表觀遺傳學(xué)特指會(huì)造成基因表達(dá)發(fā)生改變且不在 DNA 內(nèi)進(jìn)行編碼的遺傳修飾,。廣義上包括組蛋白修飾、DNA修飾和RNA修飾以及miRNA等參與的表觀遺傳調(diào)控,。 經(jīng)典表觀遺傳學(xué) 組蛋白甲基化的精氨酸與賴氨酸殘基是形成基因組的活性區(qū)與非活性區(qū)的主要決定因素。甲基化功能是激活還是沉默取決于不同位點(diǎn),,如轉(zhuǎn)錄激活相關(guān)的H3K4,、K36、K79,;轉(zhuǎn)錄沉默相關(guān)的H3K9,、 K27、H4K20),。而甲基化程度也與不同的轉(zhuǎn)錄效應(yīng)相關(guān),。 與組蛋白修飾功能相關(guān)的靶點(diǎn)包括三大類,即writers(催化修飾形成),,erasers(去除催化)以及readers(識(shí)別修飾介導(dǎo)生物學(xué)過程),。點(diǎn)擊查看:組蛋白組蛋白 H3 的表觀遺傳學(xué)“編寫酶”和“去除酶”;組蛋白 H2A,、H2B 和 H4 的表觀遺傳學(xué)“編寫酶”和“去除酶”,。 另外,調(diào)節(jié)染色質(zhì)結(jié)構(gòu)是調(diào)控轉(zhuǎn)錄激活和抑制的必要部分,。通過 ATP 依賴的染色質(zhì)重塑物(例如:NuRD,、Polycomb 和 SWI/SNF 復(fù)合體)破壞組蛋白-DNA互作。這些重塑物已被證實(shí)能夠調(diào)控基因活化/抑制,、細(xì)胞生長(zhǎng),、細(xì)胞周期和分化。 腫瘤中的表觀遺傳學(xué) 快速導(dǎo)讀 組蛋白突變及修飾:致癌組蛋白(oncohistone),,組蛋白修飾,,組蛋白突變 DNA甲基化:5-mC ,5-hmc, 診斷靶標(biāo) RNA修飾:m6A, m5C, FTO, 腫瘤發(fā)生,,腫瘤免疫 癌癥的表觀遺傳驅(qū)動(dòng)因子和調(diào)節(jié)分子:混合譜系白血病 (MLL),,骨髓增生異常綜合征 (MDS) 和急性髓系白血病 (AML),彌漫性內(nèi)生性腦橋膠質(zhì)瘤 (DIPG),,乳腺癌,,前列腺癌 1. 組蛋白突變及修飾 在組蛋白甲基化發(fā)育過程中對(duì)基因組進(jìn)行適當(dāng)編程很重要,而甲基化機(jī)制的異常調(diào)節(jié)可導(dǎo)致如癌癥等疾病狀態(tài),。事實(shí)上,,惡性腫瘤基因組分析揭示了在 H3K27 和 H3K36 中的賴氨酸突變。 表觀遺傳途徑中的突變是常見的致癌驅(qū)動(dòng)因子,。癌性組蛋白是具有致癌特征的突變組蛋白,,可影響染色質(zhì)總體特征,并驅(qū)動(dòng)基因表達(dá)改變引起的腫瘤發(fā)生,。78% 的彌漫性內(nèi)生性腦橋膠質(zhì)瘤 (DIPG) 含有一個(gè)組蛋白 H3 癌性組蛋白,,其中 Lys 27 因錯(cuò)義突變被替代為蛋氨酸,影響其被甲基化的能力并抑制基因表達(dá),。 H3K27M H3K27M 是一種癌性組蛋白,,該蛋白中的突變導(dǎo)致腫瘤發(fā)展,,其原因是Ezh2不再能夠甲基化組蛋白以及基因表達(dá)異常上調(diào),。 圖1.使用 Histone H3 (K27M Mutant Specific) (D3B5T) Rabbit mAb(綠色)和 β-Actin (8H10D10) Mouse mAb #3700(紅色),,對(duì)含敲入帶 FLAG 標(biāo)簽的 K27M 突變體組蛋白 H3.3 基因(左圖,,陽性)或敲入帶 FLAG 標(biāo)簽的野生型組蛋白 H3.3 基因(中間,陰性)的小鼠星形膠質(zhì)細(xì)胞和 HeLa 細(xì)胞(右圖,,陰性)進(jìn)行共聚焦免疫熒光分析,。 Ezh2 H3K27 甲基化改變主要是因?yàn)榛蚪M中的 Ezh2 錯(cuò)位,,可通過 ChIP-seq 分析予以確認(rèn)。已發(fā)現(xiàn) EZH2 和 H3K27me3 在染色質(zhì)中相互結(jié)合,。圖2顯示了 EZH2 和 H3K27me3 在 MYT1 基因中的結(jié)合,。 圖2 Ezh2 (D2C9) XP?Rabbit mAb #5246 – WB、IP,、IHC,、IF、F,、ChIP 突出表現(xiàn):205篇文獻(xiàn)引用該抗體 Ezh2 過表達(dá)在包括乳腺癌在內(nèi)的許多癌癥中發(fā)揮作用,,它將甲基基團(tuán)添加到 H3K27,從而觸發(fā)基因沉默,。 UTX UTX 是 EZH2 的對(duì)應(yīng)蛋白,,可去除 H3K27 的甲基基團(tuán)。 UTX (D3Q1I) 兔單克隆抗體 #33510 – WB,、IP,、IHC 圖3. 使用 UTX (D3Q1I) Rabbit mAb 對(duì)石蠟包埋的人乳腺癌進(jìn)行免疫組織化學(xué)分析。 乳腺癌可由多種不同的表觀遺傳學(xué)機(jī)制驅(qū)動(dòng),。Ezh2 蛋白介導(dǎo)的組蛋白甲基化驅(qū)動(dòng)維持細(xì)胞識(shí)別所需的基因沉默,。組蛋白甲基化調(diào)節(jié)異常會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞識(shí)別缺失,進(jìn)而導(dǎo)致腫瘤轉(zhuǎn)化和乳腺腫瘤侵襲性增加,。 H3K27me3 警惕由 EZH2 過表達(dá)或 UTX 突變引起的 H3K27 甲基化增加,。 致癌組蛋白 2019年3月20日,David Allis實(shí)驗(yàn)室在Nature雜志上發(fā)表了完整的人類致癌組蛋白(oncohistone)突變譜,。揭示致癌組蛋白通過調(diào)控染色質(zhì)變化導(dǎo)致腫瘤發(fā)生,,研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)典的“癌基因組”突變發(fā)生在組蛋白H3的N-末端尾部并影響多梳抑制因子復(fù)合物PRC1和PRC2的功能。然而,,組蛋白突變?cè)谄渌[瘤背景中的流行和功能尚不清楚,。該研究結(jié)果將大數(shù)據(jù)分析、生物化學(xué)與結(jié)構(gòu)生物學(xué)結(jié)合分析顯示,,突變發(fā)生在所有四個(gè)核心組蛋白中,,在N-末端尾部和球狀組蛋白折疊結(jié)構(gòu)域中,以及在含有重要翻譯后修飾的殘基處或附近,。組蛋白突變數(shù)據(jù)集和這里提出的關(guān)于突變對(duì)重要染色質(zhì)功能的影響的假設(shè)應(yīng)該作為染色質(zhì)和癌癥生物學(xué)領(lǐng)域的資源和起點(diǎn),,探索組蛋白突變?cè)诎┌Y中的擴(kuò)展作用【1】。 圖4. 致癌組蛋白通過調(diào)控染色質(zhì)變化導(dǎo)致腫瘤發(fā)生的模式圖. 組 蛋白修飾研究 蛋白質(zhì)組甲基化分析:MethylScan? 試劑盒與服務(wù)使用專有實(shí)驗(yàn)方法,,對(duì)蛋白質(zhì)甲基化甲基轉(zhuǎn)移酶和去甲基酶的活性進(jìn)行整體分析。我們的實(shí)驗(yàn)方法使用對(duì)單甲基精氨酸,、對(duì)稱和非對(duì)稱二甲基精氨酸及單甲基賴氨酸具有高度親和性的抗體,,富集經(jīng)蛋白酶消化處理的細(xì)胞或組織樣本中的甲基化肽段。之后使用液相色譜法(LC)串聯(lián)質(zhì)譜(MS/MS)分析樣本,,生成細(xì)胞蛋白的甲基化位點(diǎn)定量圖譜,。 圖5. SimpleChIP?試劑盒、引物和抗體用于定量分析 CST 提供SimpleChIP ?一站式解決方案,,從原理,、實(shí)驗(yàn)步驟詳解到實(shí)操演示,輕松實(shí)現(xiàn)成功ChIP,。推薦閱讀:從新手到成功:ChIP實(shí)驗(yàn)自學(xué)課程與難點(diǎn)總結(jié) 2. DNA甲基化 DNA甲基化是人們進(jìn)行最多研究的表觀遺傳修飾形式之一,。研究發(fā)現(xiàn) Ten-Eleven 轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白 TET1、TET2 和TET3 可以催化甲基化的胞嘧啶氧化成 5- 羥甲基胞嘧啶 (5-hmC),。此外,,TET 蛋白還可以氧化 5-hmC形成 5- 甲酰基胞嘧啶 (5-fC) 和 5- 羧基胞嘧啶 (5-caC),,胞嘧啶殘基甲基化導(dǎo)致基因沉默,,其對(duì)基因表達(dá)、基因組印跡和發(fā)育的恰當(dāng)調(diào)控起關(guān)鍵作用【2-4】,。研究發(fā)現(xiàn),,不恰當(dāng)?shù)腄NA甲基化(包括關(guān)鍵基因啟動(dòng)子區(qū)中CpG島的過度甲基化)與癌癥的發(fā)生有關(guān)聯(lián)。 圖6. DNA甲基化示意圖 DNMT3A 過表達(dá)或 TET2 失活引起的這種甲基化失調(diào)可導(dǎo)致異常的區(qū)域性 DNA 超甲基化,。這可以通過轉(zhuǎn)錄抑制腫瘤抑制基因或取代 CTCF 蛋白導(dǎo)致癌基因異常表達(dá),,從而促進(jìn)骨髓增生異常綜合征 (MDS) 和急性髓系白血病 (AML) 發(fā)病機(jī)制。 DNMT3A DNMT3A 是一種甲基轉(zhuǎn)移酶,,在 MDS/AML 中常發(fā)生突變,。 圖7. 使用 DNMT3A (D2H4B) 兔單克隆抗體對(duì) NCCIT、NTERA-2 cl.D1 和 HCT 116 細(xì)胞的提取物進(jìn)行蛋白印跡分析,。該抗體可檢測(cè) DNMT3A 的多個(gè)同工型,,包括同工型 1 和同工型2 TET2 甲基轉(zhuǎn)移酶 TET2 失活是骨髓增生異常綜合征 (MDS/AML) 中最常見的突變基因,,MDS 是骨髓增生,、巨核細(xì)胞增生和/或細(xì)胞系發(fā)育異常,,其中 30% 可進(jìn)展為急性髓系白血病 (AML)。它在彌漫性大 B 細(xì)胞淋巴瘤中也有突變,。在實(shí)體腫瘤,,如前列腺癌、黑色素瘤與口腔鱗狀細(xì)胞癌中,,TET2 蛋白表達(dá)通常減少,。 圖8. 5-mC & 5-hmC DNA異常甲基化會(huì)導(dǎo)致癌癥等疾病。抑癌基因中啟動(dòng)子 CpG 島的過甲基化與基因沉默和癌癥發(fā)生有關(guān),。同時(shí) 5-hmC 的低水平與髓性白血病和黑色素瘤等癌癥有關(guān),,此外,大多數(shù)基因組 DNA 的低甲基化與癌癥發(fā)病有關(guān)并且可能導(dǎo)致癌癥發(fā)病,。除了結(jié)腸癌,、乳腺癌和胃癌之外,DNMT1,、DNMT3A 和 DNMT3B 還在許多癌癥中過表達(dá),,包括急性和慢性髓細(xì)胞性白血病 【5-8】。而DNA 甲基化標(biāo)記也可用于診斷和確定某些癌癥預(yù)后,,包括前列腺癌,、黑色素瘤以及口腔鱗狀細(xì)胞癌。 關(guān)注腫瘤中DNA異常甲基化,,常檢測(cè)由 DNMT3A 過表達(dá)或 TET2 失活導(dǎo)致的 5-甲基胞嘧啶和 5-羥甲基胞嘧啶水平的變化,。 圖8. 使用 5-Methylcytosine (5-mC) (D3S2Z) Rabbit mAb #28692(綠色)和 DYKDDDDK Tag (9A3) Mouse mAb #8146(紅色),對(duì)轉(zhuǎn)染表達(dá)帶有 DYKDDDDK 標(biāo)簽的 TET1 催化結(jié)構(gòu)域 (TET1-CD) 表達(dá)載體的 293T 細(xì)胞進(jìn)行共聚焦免疫熒光分析,。藍(lán)色偽彩 = DRAQ5? #4084(DNA 熒光染料),。正如預(yù)期的一樣,表達(dá) TET1-CD(紅色)的 293T 細(xì)胞出現(xiàn) 5-甲基胞嘧啶(綠色)水平下降,。 已有研究表明,,5羥甲基化(5-hmC)在多種腫瘤中異常調(diào)控, 5-羥甲基胞嘧啶(5-hmC)的基因組譜檢測(cè)是成人癌癥患者的強(qiáng)有力的診斷生物標(biāo)志物【9】,。來自芝加哥大學(xué)的科學(xué)家團(tuán)隊(duì),,基于前期神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞系5hmC研究基礎(chǔ)上,通過建立DNA 5hmC化學(xué)捕獲技術(shù)對(duì)神經(jīng)母細(xì)胞瘤做進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),,5-hmC的DNA修飾促進(jìn)了活性基因轉(zhuǎn)錄,,功能基因突變,通路激活等高度相關(guān),,通過檢測(cè)驅(qū)動(dòng)神經(jīng)母細(xì)胞瘤的5-hmC基因表達(dá)譜,,可作為神經(jīng)母細(xì)胞瘤的新型預(yù)后標(biāo)志物【10】。 DNA 甲基化相關(guān)產(chǎn)品列表
3.RNA修飾 m6A m6A是高等生物mRNA和lncRNAs上豐富的甲基化修飾,。并且是一種動(dòng)態(tài)可逆的修飾方式,。主要存在于mRNA的CDS區(qū)和3’UTR區(qū),。m6A 可調(diào)節(jié)各種細(xì)胞功能,包括 RNA 剪切,、翻譯調(diào)控,、多能性和細(xì)胞命運(yùn)決定、神經(jīng)元功能及疾病 【1, 14-17】,。m6A的相關(guān)修飾,,由甲基轉(zhuǎn)移酶復(fù)合體(METTL3、METTL14和WTAP組成),、去甲基酶(FTO和ALKBH5)以及相應(yīng)的閱讀器(YTHDF1/2/3,,YTHDC1)協(xié)同調(diào)控。 已發(fā)現(xiàn)的m6A RNA甲基化功能有很多,,如m6A 寫入蛋白復(fù)合體與 AML 和子宮內(nèi)膜癌等各種癌癥類型有關(guān),。此外,m6A 與化療耐藥性有關(guān)【11】,。 圖9. 來自【11】 2019年2月7日,,中科院北京基因組研究所韓大力團(tuán)隊(duì)與清華大學(xué)徐萌團(tuán)隊(duì)、美國芝加哥大學(xué)何川團(tuán)隊(duì)合作在Nature上報(bào)道發(fā)現(xiàn),,RNA m6A修飾通過調(diào)控樹突狀細(xì)胞的溶酶體組織蛋白酶翻譯效率,,影響腫瘤抗原特異性的T細(xì)胞免疫應(yīng)答新機(jī)制;與野生型小鼠相反,,Ythdf1缺陷型小鼠顯示出升高的抗原特異性CD8 + T細(xì)胞抗腫瘤反應(yīng),,且該小鼠模型中,PD-L1檢查點(diǎn)阻斷的治療功效增強(qiáng),,暗示YTHDF1作為抗癌免疫療法中的潛在治療靶標(biāo)【12】,。 來自中山大學(xué)腫瘤防治中心林東昕/鄭健中腫課題組與徐瑞華課題組發(fā)現(xiàn)吸煙及二手煙導(dǎo)致胰腺癌的新機(jī)制,通過m6A修飾的香煙煙霧誘導(dǎo)的miR-25-3p過度成熟促進(jìn)了胰腺癌的發(fā)展和進(jìn)展【13】,。 黑色素瘤是最致命和難治愈的癌癥之一,。在已有研究報(bào)道,m6A去甲基化酶FTO對(duì)的N6-甲基腺苷(m6A)mRNA去甲基化會(huì)促進(jìn)黑素瘤生長(zhǎng)和減少對(duì)抗PD-1阻斷免疫療法的反應(yīng),。結(jié)果顯示FTO抑制與抗PD-1阻斷的組合可降低黑素瘤中對(duì)免疫療法的抗性【14】,。 另外,中科院上海藥物研究所楊財(cái)廣研究員 聯(lián)合聯(lián)合美國希望之城貝克曼研究所陳建軍教授團(tuán)隊(duì),,佛羅里達(dá)大學(xué)錢志堅(jiān)教授團(tuán)隊(duì)發(fā)表研究工作,,開發(fā)了兩新型高效FTO小分子抑制劑,特異性抑制FTO的m6A去甲基化酶活性,,并抑制急性髓系白血病細(xì)胞的增殖,,有望用于該病的臨床治療(15)。 針對(duì)m6A研究,CST提供高特異m6A抗體,,N6-Methyladenosine (m6A) (D9D9W) Rabbit mAb #56593 可檢測(cè)內(nèi)源水平的 N6- 甲基腺苷 (m6A),。該抗體經(jīng)如下驗(yàn)證: 1. CST內(nèi)部驗(yàn)證顯示,該抗體使用 ELISA 和斑點(diǎn)印跡實(shí)驗(yàn)進(jìn)行了驗(yàn)證,,并且表明對(duì) m6A 有高特異性。 2. 該抗體不會(huì)與未修飾的腺苷,、N6- 二甲基腺苷,、N1- 甲基腺苷或 2'-O-甲基腺苷發(fā)生交叉反應(yīng)。 3. 獨(dú)立實(shí)驗(yàn)室的實(shí)驗(yàn)表明,,該抗體在 RNA-IP-seq 中有效,。請(qǐng)按實(shí)驗(yàn)決定的稀釋度使用。 m5C 楊運(yùn)桂團(tuán)隊(duì)聯(lián)合中山大學(xué)腫瘤醫(yī)院周芳堅(jiān)團(tuán)隊(duì),、謝丹團(tuán)隊(duì)和中科院生化細(xì)胞所黃旲團(tuán)隊(duì)的研究工作揭示了mRNA甲基化調(diào)控實(shí)體瘤膀胱癌發(fā)生的分子機(jī)制,,發(fā)現(xiàn)m5C通過細(xì)胞質(zhì)內(nèi)新結(jié)合蛋白YBX1調(diào)控mRNA的穩(wěn)定性,進(jìn)而調(diào)控膀胱癌的增殖和轉(zhuǎn)移【16】,。 RNA 修飾相關(guān)抗體
4. 癌癥的表觀遺傳驅(qū)動(dòng)因子和調(diào)節(jié)分子 在尋找新的預(yù)防、檢測(cè)和治療方法時(shí),,了解表觀遺傳學(xué)在癌癥發(fā)生和進(jìn)展中的作用至關(guān)重要,。我們總結(jié)了幾種癌癥的重要表觀遺傳學(xué)生物標(biāo)志物、調(diào)節(jié)因子和組蛋白修飾的入門指南。 綜合如上表觀遺傳關(guān)鍵因素,,染色質(zhì)和表觀遺傳調(diào)節(jié)對(duì)于在發(fā)育期間和處于壓力條件下的基因組正確編碼至關(guān)重要,,由于基因表達(dá)的異常調(diào)節(jié)會(huì)導(dǎo)致疾病狀態(tài),腫瘤的發(fā)生或轉(zhuǎn)移相關(guān),。針對(duì)腫瘤中異常的表觀失調(diào),,針對(duì)腫瘤的表觀遺傳調(diào)控,有望開發(fā)更多染色質(zhì)重塑等靶點(diǎn)藥物,,或與腫瘤靶向藥物,,化療或免疫治療相關(guān)藥物聯(lián)合用藥,用于腫瘤治療,。 【參考文獻(xiàn)】 1. Benjamin A. et al. (2019) Nature 567, 473–478. 2. Hermann, A. et al. (2004) Cell Mol Life Sci 61, 2571-87. 3. Turek-Plewa, J. and Jagodziński, P.P. (2005) Cell Mol Biol Lett 10, 631-47. 4. Tahiliani, M. et al. (2009) Science 324, 930-5. 5. Mizuno, S. et al. (2001) Blood 97, 1172-1179. 6. Robertson, K.D. et al. (1999) Nucleic Acids Res. 27, 2291-2298. 7. Xie, S. et al. (1999) Gene 236, 87-95. 8. Kanai, Y. et al. (2001) Int. J. Cancer 91, 205-212. 9. Mariani CJ, Vasanthakumar A, Madzo J, et al. (2014) Cell Reports 7:1343-1352 10. Mark A. Applebaum, et al. (2019 )JCO Precision Oncology 3, 1-12 11. Ting Sun, et al. (2019) Biomedicine & Pharmacotherapy 112, 108613. 12. Dali Han,,et al. (2019) .Nature.566,270–274. 13. Jialiang Zhang. et al. (2019) Nature Communications 10, 1858. 14. Seungwon Yang,,et al. (2019) Nature Communications. 15. Huang, Y. et al. (2019) Cancer Cell , 35 (4), 677-691 16. Xin Chen, et al. (2019) Nature Cell Biology21, 978–990 |
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