很多童鞋在做WB的時(shí)候,都會(huì)碰到一些奇奇怪怪的事情,,有些事情可以解釋,,而有些事情,簡(jiǎn)直是詭異到摸不著頭腦,。下面小編給大家整理一些WB中的常見問題,,大家一起探討探討吧。
1,、細(xì)胞裂解液主要組分有哪些,?SDS、NP-40,、TritonX-100有何作用,?
答:細(xì)胞裂解液一般含有緩沖成分Tris,裂解成分(SDS,、NP-40,、TritonX-100等),以及蛋白酶抑制劑成分(PMSF等),。 SDS,、NP-40、TritonX-100這三種去垢劑的作用是不同的,,或者說作用力量強(qiáng)弱不同,。 SDS屬于離子型去垢劑,最厲害,,基本可以把細(xì)胞完全破掉,,DNA會(huì)釋放出來,裂解液變得很粘稠,。 NP-40是很溫和的去垢劑,,1%濃度的基本可以破壞掉包膜,而對(duì)核膜破壞的作用弱,,結(jié)合特定的buffer可以獲得胞漿蛋白,。 TritonX-100的能力介于NP-40和SDS之間,偏向于NP40,,也是常用的細(xì)胞裂解液成分之一,,在保護(hù)蛋白活性方面有一定作用(SDS基本會(huì)使蛋白變性失活)。
2,、Western 及 IP細(xì)胞裂解液,、RIPA裂解液、NP-40裂解液,、SDS裂解液的用途,?
答:用于普通的Western 、IP或co-IP,,我們推薦使用Western及IP細(xì)胞裂解液,,該裂解液已被國(guó)內(nèi)各大研究機(jī)構(gòu)廣泛使用,用戶普遍反映很好,。裂解細(xì)胞或組織后,,沒有非常粘滯的透明狀DNA團(tuán)塊形成,不必采用超聲處理等就可以非常理想地用于后續(xù)操作,。另外該裂解液裂解的產(chǎn)物也適合用于磷酸化,,蛋白的Western 檢測(cè)。對(duì)于某些特殊蛋白的IP,,如果發(fā)現(xiàn)Western及IP細(xì)胞裂解液效果不是非常理想,,可以嘗試用RIPA裂解液(強(qiáng)、中或弱)或NP-40裂解液,。如果發(fā)現(xiàn)IP的時(shí)候背景很高,,即非特異的蛋白也被IP下來,,則需要選用裂解強(qiáng)度較高的裂解液,例如RIPA裂解液(強(qiáng)或中),。如果發(fā)現(xiàn)目的蛋白無法被IP下來,,則說明裂解液的強(qiáng)度過強(qiáng),可以使用較為溫和的裂解液如RIPA裂解液(弱)或NP-40裂解液,。對(duì)于某些難溶解蛋白的Western,,如果發(fā)現(xiàn)Western及IP細(xì)胞裂解液效果不是非常理想,可以嘗試使用裂解強(qiáng)度更高的裂解液,,例如RIPA裂解液(強(qiáng),、中)或SDS裂解液。
3,、聚丙烯酰胺凝膠電泳的基本原理,?
答:聚丙烯酰氨凝膠電泳簡(jiǎn)稱為PAGE(Polyacrylamide gel electrophoresis),是以聚丙烯酰胺凝膠作為支持介質(zhì)的一種常用的電泳技術(shù),。聚丙烯酰胺凝膠由單體丙烯酰胺和甲叉雙丙烯酰胺聚合而成,,聚合過程由自由基催化完成。催化聚合的常用方法有兩種:化學(xué)聚合法和光聚合法,?;瘜W(xué)聚合以過硫酸銨(AP)為催化劑,以四甲基乙二胺(TEMED)為加速劑,。在聚合過程中,,TEMED催化過硫酸銨產(chǎn)生自由基,后者引發(fā)丙烯酰胺單體聚合,,同時(shí)甲叉雙丙烯酰胺與丙烯酰胺鏈間產(chǎn)生甲叉鍵交聯(lián),,從而形成三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)。
PAGE根據(jù)其有無濃縮效應(yīng),,分為連續(xù)系統(tǒng)和不連續(xù)系統(tǒng)兩大類,,連續(xù)系統(tǒng)電泳體系中緩沖液PH值及凝膠濃度相同,帶電顆粒在電場(chǎng)作用下,,主要靠電荷和分子篩效應(yīng),。不連續(xù)系統(tǒng)中由于緩沖液離子成分,PH,,凝膠濃度及電位梯度的不連續(xù)性,,帶電顆粒在電場(chǎng)中泳動(dòng)不僅有點(diǎn)和效應(yīng),分子篩效應(yīng),,還具有濃縮效應(yīng),,因而其分離條帶清晰度及分辨率均較前者佳。不連續(xù)體系由電極緩沖液、濃縮膠及分離膠所組成,。濃縮膠是由AP催化聚合而成的大孔膠,,凝膠緩沖液為PH6.7的Tris-HCl,分離膠是由AP催化聚合而成的小孔膠,,凝膠緩沖液為PH8.9 Tris-HCl,。電極緩沖液是PH8.3 Tris-甘氨酸緩沖液。2種孔徑的凝膠,、2種緩沖體系,、3種PH值使不連續(xù)體系形成了凝膠孔徑,、PH值,、緩沖液離子成分的不連續(xù)性,這是樣品濃縮的主要因素,。
4,、怎樣才能把膠跑的非常漂亮,泳道都能很直,,上樣的量和灌膠是否很重要,,電壓有什么要求?
答:影響跑膠跑的質(zhì)量,,有以下幾個(gè)因素: 1) 電壓,,小的電壓會(huì)使膠的分子篩效應(yīng)得到充分發(fā)揮。電壓越小,,條帶越漂亮,,濃縮膠55V,分離膠75V就能跑得很好,。 2) 膠的均勻度,,膠越均勻,條帶越窄,,分離越均勻,。倒膠之前,一定要充分混勻,,玻璃板一定要干凈,,雙蒸水隔離時(shí),一定要比較輕地加上去,,避免稀釋上層的分離膠,。
5、western blot使用的膜哪種最好啊,,PVDF好還是NC膜,,如何選擇?
答:PVDF膜可重復(fù)使用,,特別適合蛋白印跡,,結(jié)合能力較強(qiáng),,但價(jià)格比較昂貴。NC膜價(jià)格比較便宜,,應(yīng)用較廣,,結(jié)合牢固性差一些,韌性也不如PVDF,,不能重復(fù)使用,,但蛋白吸附容量高,親水性較好,。都可以用麗春紅染色,。
6、請(qǐng)問一下PVDF膜和硝酸膜結(jié)合蛋白的原理是什么,?
答:一般而言,,硝酸纖維素膜是通過疏水作用來和蛋白質(zhì)相聯(lián),這樣的話,,反復(fù)洗幾次后,,蛋白容易掉下來,結(jié)果較差,。PVDF膜主要通過它膜上的正電荷和蛋白接合,,同時(shí)也有疏水作用,但相對(duì)較弱,。這樣的話,,PVDF膜和蛋白接合較牢固,不易脫落,,結(jié)果較好,。
7、加甲醇的目的是什么,?
答:加甲醇起著一定的固定作用,,因?yàn)樾》肿拥鞍踪|(zhì)容易轉(zhuǎn)出去。(特別是在硝酸纖維素膜上,,因?yàn)镹C膜結(jié)合蛋白質(zhì)的能力較弱),。
8、我想盡量提高轉(zhuǎn)膜的效率(我的實(shí)驗(yàn)要求轉(zhuǎn)到膜上的蛋白越多越好,,不管是什么大小的蛋白)不知道有哪些辦法,?
答:不管怎么轉(zhuǎn)都會(huì)存在蛋白轉(zhuǎn)移不完全(電壓過小、時(shí)間過短)或過度轉(zhuǎn)移(電壓過大,、時(shí)間過長(zhǎng))的問題,,魚(小分子量)和熊掌(大分子量蛋白)不可兼得。建議把膠切成兩半,比如以35KD為界,,分別進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,,下半時(shí)間短,上半時(shí)間長(zhǎng)一點(diǎn),,應(yīng)該會(huì)好一些,。
9、Western blot中濕轉(zhuǎn)和半干轉(zhuǎn)的方法區(qū)別,?
答:半干式轉(zhuǎn)膜速度快,,而濕式成功率高并特別適合用于分子量大于100KD的蛋白。
10,、半干轉(zhuǎn)是否要求膜,,濾紙,膠同樣大???因?yàn)槟z大小不一定規(guī)則,,膜和濾紙會(huì)大一點(diǎn),,那樣會(huì)不會(huì)短路?什么是短路,?如何控制和發(fā)現(xiàn)短路呢,?
答:可以相等,但是如果膜比凝膠大就比較容易形成短路了,,上下兩層濾紙也不能因過大而相互接觸,,這樣同樣會(huì)短路,電流不會(huì)通過膠和濾紙,。轉(zhuǎn)移前和轉(zhuǎn)移過程中看看電壓就行,,正常的半干是慢慢變高的,最后結(jié)束時(shí)一般是開始的1.5-3倍都是正常的,。一般buffer和濾紙選的對(duì)就不會(huì)短路,。
11、麗春紅(Ponceau S)染色的原理及特點(diǎn),?
答:麗春紅染色(Ponceau S Staining Solution)可以用于PVDF膜,、硝酸纖維素膜和醋酸纖維素膜上的蛋白的檢測(cè)。麗春紅帶負(fù)電荷,,可以與帶正電荷的氨基酸殘基結(jié)合,,同時(shí)麗春紅也可以與蛋白的非極性區(qū)結(jié)合,從而形成紅色的條帶,。麗春紅對(duì)蛋白的染色是可逆的,,染色后可以用蒸餾水,PBS或其它適當(dāng)溶液洗去。
12,、如何更高效的監(jiān)測(cè)轉(zhuǎn)膜效率呢,?
答:立春紅(也包括考染膠)的靈敏度和HRP-ECL體系的靈敏度相差太遠(yuǎn),即使立春紅染膜無顏色,,也無法提示W(wǎng)B結(jié)果會(huì)不會(huì)失?。既灸z無顏色也不能說明轉(zhuǎn)膜充分了,除非你銀染),,你仍然得繼續(xù)后面的操作,;相反靶蛋白區(qū)域有顏色,亦無法提示靶蛋白就轉(zhuǎn)膜完全了,,也許只是另外一個(gè)分子量大小相近的蛋白,。因此,無論立春紅染膜失敗或成功,,你都必須進(jìn)行后續(xù)的操作,。而立春紅染膠不僅增加額外的操作時(shí)間,而且增加一輪漂洗的操作,,對(duì)膜和膜上的蛋白都不好,。
除了立春紅染色外,你還可以選擇預(yù)染Marker來監(jiān)測(cè)你的轉(zhuǎn)膜效率,。理論上,,同時(shí)轉(zhuǎn)膜、顏色是交聯(lián)到蛋白上的,,因此顏色有多深表明有多少蛋白轉(zhuǎn)印到膜上,,非常直觀、不會(huì)增加任何額外的操作(固定marker的上樣量非常必要),。
13,、抗體孵育緩沖液的選擇?
答:某些實(shí)驗(yàn)室傳統(tǒng)上在封閉液中孵育抗體,,而有些實(shí)驗(yàn)室用不含封閉劑的TBST來孵育抗體,,結(jié)果因抗體而異,有時(shí)兩者結(jié)果相同,,有時(shí)結(jié)果不同,。如果不存在高背景的問題,某些抗體用含低濃度(0.5 – 0.25%)脫脂奶粉或 BSA的封閉液來稀釋,,可產(chǎn)生相對(duì)更強(qiáng)的信號(hào)條帶,。
|
|